70. מהן אמצעי הזהירות לקביעת כלור שיורית?
כלור אינו יציב מאוד בתמיסה מימית, במיוחד בריכוזים נמוכים, והתוכן יקטן במהירות. קצב ההפחתה של כלור יואץ כאשר הוא נחשף לאור השמש ואור חזק אחר או נסער. לפיכך, לא ניתן לאחסן את הדגימה לאחר הדגימה, ויש להתחיל באופן מיידי את קביעת הכלור, תוך הימנעות מחשיפה קלה ותסיסה של דגימת המים.
כל הפעולות בתהליך הקביעה חייבות להימנע מחשיפה ישירה של אור השמש, ועדיף להתבצע בטמפרטורה הנמוכה ביותר ובאור הרך. בנוסף, כל השיטות הקולורימטריות דורשות חסקי צבע ועכירות כדי לפצות על הצבע והכרומטיות של המים הגולמיים, במיוחד כאשר העכירות והכרומטיות הם גבוהים, יש לקבוע את הערך הריק.
בעת שימוש בשיטה O-tolidine Visual Colorimetric כדי לקבוע כלור שיורי, אם דגימת המים מעורבבת באופן שווה עם תמיסת O-tolidine הסטנדרטית ואז השיטה הקולמטריה מתבצעת מייד, התוצאה הנמדדת היא הכלור הנותר החופשי. אם דגימת המים ממוקמת במקום חשוך למשך 10 דקות כדי לייצר את הכרומטיות הגבוהה ביותר לפני ביצוע השיטה הקולורימטרית, התוצאה היא הכלור הנותר הכולל. כלור הכלור הנותר מינוס הכלור הנותר החופשי הוא הכלור המשולב שנותר.
בעת שימוש בשיטה O-tolidine Visual Colorimetric כדי לקבוע, אם הכלור הנותר גדול, יוצר צבע צהוב כתום; אם האלקליות של דגימת המים גבוהה מדי והכלור הנותר קטן, יוצר צבע ירוק בהיר או כחול בהיר. בשלב זה ניתן להוסיף 1 מ"ל של תמיסה סטנדרטית O-tolidine כדי לייצר צבע צהוב בהיר רגיל.
71. מהם ההבדלים בין השלב הביולוגי של שיטת הביופילם לבוצה מופעלת?
מאפייני השלב הביולוגי של מערכת הטיפול ביופילם שונים מאלו של תהליך הבוצה המופעל, בעיקר מבחינת מינים וחלוקה מיקרוביאלית.
באופן כללי, בשל השינוי ההדרגתי באיכות המים ושיפור התנאים הסביבתיים לצמיחה מיקרוביאלית, הסוגים והכמויות של המיקרואורגניזמים במערכת הביופילם הם יותר מאלו בתהליך הבוצה המופעל, ושרשרת המזון ארוכה ומורכבת יותר, במיוחד הגידול של פטריות נימה, פרוטוזואה ובטאטריה מטוס, ובטקטריה מסוימת. אצות יכולות להופיע באזורים שנחשפו לאור שמש, וגם חרקים כמו זבובי פילטר יכולים להופיע. מאפייני ההתפלגות הם כי לאורך עובי הביופילם (מהשטח לפנים) או כיוון ההשפעה (זמן מגע שונה עם ההשפעה), סוגי הכמויות של המיקרואורגניזמים מראים הבדלים גדולים. בשלב הראשון של טיפול רב-שלבי או החלק העליון של שכבת המילוי של הזרימה כלפי מטה, הביו-פילם נשלט לרוב על ידי חיידקים פלוקולנטיים, ועובי הסרט גדול יחסית (2-3 מ"מ); עם עליית מספר השלבים או החלק התחתון של שכבת מילוי הזרימה כלפי מטה, מכיוון שאיכות המים שהיא קשורה אליו טופלה חלקית, יופיעו בהדרגה חיידקים חוטים יותר, פרוטוזואה ומטאזואה; סוגי המיקרואורגניזמים הולכים וגדלים, אך עובי הביופילם יורד ללא הרף (1-2 מ"מ). המיקרואורגניזמים על פני הביופילם הם כולם אירוביים, וככל שהעובי גדל, המיקרואורגניזמים הופכים בהדרגה לפקולטטיביים או אפילו אנאירוביים.
הביופילם קבוע על חומר המסנן או המילוי, וזמן השמירה המוצק הביולוגי SRT (גיל בוצה) ארוך, כך שהוא יכול לגדל מיקרואורגניזמים עם זמן דור ארוך ושיעור התפשטות נמוך מאוד, כמו חיידקי חנקן. מספר גדול של חיידקים נימה עשויים להופיע גם בביופילם, אך התפוצצות בוצה לא תתרחש. בהשוואה לשיטת הבוצה המופעלת, שיעור התזונה של בעלי החיים באורגניזמים בביופילם גדול יותר, גם שיעור ההישרדות של מיקרו-חיות הוא גבוה יותר והוא יכול לאכלס אורגניזמים ברמת תזונה גבוהה. אוליגוצ'טס וחרקים מאכלסים מעל צילומים טורפים, סיבובים ונמטודות. לפיכך, שרשרת המזון בביו -פילם ארוכה יותר משרשרת המזון בבוצה המופעלת, וזו הסיבה שכמות הבוצה המיוצרת בשיטת הביופילם היא פחות מזו של שיטת הבוצה המופעלת.
המיקרואורגניזמים האופייניים בכל רמה או כל שכבת מילוי תהיה שונה בגלל איכות שפכים שונה, כלומר שינויים באיכות המים יגרמו לשינויים בסוגים ובמספר המיקרואורגניזמים בביופילם. כאשר הריכוז המשפיע גדל, ניתן לציין כי המיקרואורגניזמים האופייניים לרמה המקורית נעים כלפי מטה, כלומר המיקרואורגניזמים במקור ברמה הקדמית או שכבת המילוי העליונה יכולים להופיע במפלס האחורי או בשכבה התחתונה של מילוי. לפיכך, ניתן לראות שינויים דומים באמצעות תצפית שלב ביולוגי כדי להסיק שינויים בריכוז שפכים או עומס בוצה.
72. מה הפירוש של מחוון ספירת החיידקים הכולל במים?
ספירת החיידקים הכוללת מתייחסת למספר המושבות הגדלות במאגר דגימת מים במדיום אגר מזין לאחר טיפוח ב 37OC למשך 24 שעות. יחידת המדידה היא בדרך כלל המספר הכולל של החיידקים הכלולים בכל מ"ל מים. המספר הכולל של החיידקים במים קשור לרוב למידת הזיהום האורגני בגוף המים, והוא אחד המדדים החשובים להערכת מידת זיהום המים ופגיעה אפשרית בגוף האדם.
שיטת הניתוח של המספר הכולל של החיידקים משתמשת בשיטת הצלחת הסטנדרטית כדי לספור את החיידקים במדגם המים, שהיא שיטה לקביעת צפיפותם של חיידקים הטרוטרופיים אנירוביים אירוביים ופקולטטיביים במים. עם זאת, מכיוון ששום בסיס חומרים מזינים או מצב סביבתי לא יכול לעמוד בדרישות הפיזיולוגיות של כל החיידקים במדגם מים, וחיידקים במים יכולים להתקיים בצורה של אנשים בודדים, זוגות, שרשראות, אשכולות או אשכולות, ספירת המושבה המדודה היא למעשה נמוכה ממספר החיידקים ששורדים בפועל במדגם המים שנבדק.
73. מהם אמצעי הזהירות לקביעת המספר הכולל של החיידקים?
השתמש בשיטת הפעולה האספטית כדי לספוג 1 מ"ל מדגם מים או 2 עד 3 דגימות מים מדוללות עם כפולות דילול מתאימות, הזרקו אותם לצלחת המעוקרת, ואז שפכו 15 מ"ל של אגר מזין בינוני ומערבבים אותה היטב עם דגימת המים, יש למזוג שתי דגימות מקבילות לכל דגימת מים, ובנוסף, שליטה ריקה עם אגר -תזונתי בלבד עם אגר תזונתי במדין בכל דבר.
לאחר התרבות, יש לבצע את ספירת מושבות הצלחות באופן מיידי. אם יש לדחות את הספירה, ניתן לאחסן את הצלחת בסביבה של 5-10OC, אך לא במשך יותר מ- 24 שעות, ואין להשתמש בתרגול זה כשיטת פעולה שגרתית.
כשאתם סופרים את מושבות הצלחת, תוכלו להתבונן בעין בלתי מזוינת. כדי למנוע השמטות, השתמש בזכוכית מגדלת כדי לבדוק במידת הצורך. לאותן מושבות שנראות דומות וקרובות זו לזו אך אינן נוגעות, כל עוד המרחק פחות מקוטר המושבה הקטנה ביותר, יש לספור אותן בנפרד. יש לספור את המושבות שנמצאות בקשר הדוק אך יש להן הופעות שונות (מורפולוגיה או צבע) בנפרד.
בעת חישוב ספירת המושבה הממוצעת של אותה דילול, אם אחת מהצלחות יש מושבות פתית גדולות שגדלות, אין להשתמש בה, ויש להשתמש בצלחת ללא מושבות פתית כספירת המושבה של הדילול. אם מושבות הפתית הן פחות ממחצית הצלחת והפצת המושבות הנותרות אחידה מאוד, ניתן להכפיל את ספירת המושבה של 1/2 מהצלחת עם צמיחה אחידה על ידי 2 כדי לייצג את ספירת המושבה של הצלחת כולה.
התוצאה של ספירת החיידקים הכוללת היא המספר הכולל של מושבות בכל צלחת או המספר הממוצע של מושבות בצלחות ניסוי מקבילות של אותה דילול כפול הדילול. כאשר התוצאה הסופית היא בתוך 100, התוצאה נרשמת לפי מספר המושבות בפועל; כאשר הוא גדול מ- 100, משתמשים בשתי דמויות משמעותיות ומובעות כאקספקטנט של 10. אם לא ניתן לספור את מספר המושבות, יש לציין את מספר הדילול בעת דיווח על התוצאה.
74. כיצד לחשב את המספר הכולל של החיידקים במדגם מים המבוסס על תוצאת ספירת המושבה?
בעת חישוב תוצאות הבדיקה של המספר הכולל של החיידקים, יש צורך להשוות ולחשב על סמך המספר הממוצע של מושבות בדילולים שונים. השיטה היא כדלקמן:
⑴ ראשית, בחר את המקרה בו המספר הממוצע של מושבות הוא בין 30 ל -300 לחישוב. כאשר המספר הממוצע של מושבות בדילול אחד בלבד עומד בטווח זה, המספר הממוצע של מושבות כפול מהדילול שלה משמש כתוצאה מהמספר הכולל של החיידקים במדגם המים.
⑵ אם המספר הממוצע של מושבות בשתי דילולים הוא בין 30 ל -300, יש לקבוע את שיטת החישוב על פי היחס בין השניים. אם היחס הוא פחות מ -2, הממוצע של ספירת המושבה הממוצעת כפול הדילול תשמש כתוצאה מספירת החיידקים הכוללת של דגימת המים; אם היחס גדול מ- 2, הקטן יותר בספירת המושבה הממוצעת כפול הדילול שלה מכפיל ישמש כתוצאה מספירת החיידקים הכוללת של דגימת המים.
אם ספירת המושבה הממוצעת של כל הדילולים עולה על 300, ספירת המושבה הממוצעת של הדילול הגדול ביותר כפול מכפיל הדילול שלה תשמש כתוצאה מספירת החיידקים הכוללת של דגימת המים.
אם ספירת המושבה הממוצעת של כל הדילולים היא פחות מ -30, ספירת המושבה הממוצעת של הדילול הקטן ביותר כפול מכפיל הדילול שלה תשמש כתוצאה מספירת החיידקים הכוללת של דגימת המים.
אם ספירת המושבה הממוצעת של כל הדילולים אינה בין 30 ל -300, ספירת המושבה הממוצעת הקרובה ביותר ל -30 או 300 כפול הדילול שלה תשמש כתוצאה מספירת החיידקים הכוללת של דגימת המים.
75. מה המשמעות של ספירת הקוליפורם (ערך)?
חיידקים קוליפורמיים מתייחסים למעמד של אנירובי אוורובי או פקולטיטיבי, תסיסה לקטוז, מוטות גרם-שליליים, נטולי נבגים, כך שהם נקראים לפעמים גם קוליפורמים צואתיים או קולי Escherichia. חיידקי קוליפורם יכולים לייצר חומצה וגז לאחר שתורבתו במדיום לקטוז ב 37OC למשך 24 שעות. המספר (הערך) של חיידקי הקוליפורם נמדד בדרך כלל במספר חיידקי הקוליפורם הכלולים ב- 1L או 100 מ"ל מים.
אם מקור המים מזוהם על ידי צואה, הוא עלול להיות מזוהם על ידי פתוגנים במעי וגורם למחלות זיהומיות במעי. מכיוון שפתוגנים במעי מהווים חלק קטן יחסית ממספר המיקרואורגניזמים, לעיתים קרובות קשה מאוד להפריד פתוגנים למים, במיוחד מי ברז. חיידקי קוליפורם הם הסוג הנפוץ והגדול ביותר של חיידקים בקרב חיידקי אירובי במעי, ולכן הם משמשים לרוב כחיידקי אינדיקטור לזיהום צואה. כלומר, מספר החיידקים הקוליפורמיים במים משמש כדי לשפוט אם מקור המים מזוהם על ידי צואה, ואפשרות להסיק שמקור המים מזוהם על ידי פתוגנים במעי.
76. מהן השיטות לקביעת מספר החיידקים הקוליפורמיים?
ישנן שתי שיטות נפוצות לקביעת חיידקי הקוליפורם הכוללים: שיטת תסיסה מרובת צינורות ושיטת פילטר ממברנה.
שיטת התסיסה הרב-צינורות מבוססת על המאפיינים של חיידקי קוליפורם כמו תסיסה לקטוז, מכתים שליליים גרם, ללא נבגים, וצורת מוט. הוא נבדק באמצעות שלושה שלבים לקביעת המספר הכולל של חיידקי הקוליפורם במדגם המים. שיטת התסיסה הרב-צינורות משתמשת במספר הסביר ביותר כדי לבטא את תוצאות הניסוי, הידועות גם בשם MPN. זוהי למעשה שיטה להערכת הצפיפות והאיכות התברואית של E. coli בגופי מים המבוססים על תיאוריה סטטיסטית. הערכה זו נוטה להיות גדולה מהמספר בפועל. הערך המשוער של ספירת הקוליפורם נקבע על ידי הדילול המראה תוצאות חיוביות ושליליות כאחד. בעת תכנון מספר החזרות הנדרשות לבדיקת דגימת מים, עליו להיות מבוסס על דיוק הנתונים הנדרשים.
שיטת פילטר הממברנה משתמשת בממברנה מיקרופורית מעוקרת מיוחדת כדי לסנן את דגימת המים. לאחר החיידקים נלכדים על הממברנה, הממברנה מחוברת למדיום תרבות נתרן סולפיט של פוקסין לתרבות. מכיוון שחיידקים קוליפורמיים יכולים לתסס לקטוז, מושבות אדומות-סגולות עם ברק מתכתי יופיעו לאחר טיפוח על קרום המסנן. על ידי ספירת מספר המושבות עם מאפיין זה על קרום המסנן, ניתן לחשב את מספר החיידקים הקוליפורמיים הכלולים בכל ליטר של דגימת מים. שיטת קרום המסנן יכולה למדוד נפח גדול יותר של דגימות מים ויכולה להשיג תוצאות מהר יותר משיטת התסיסה הרב-צינורות, אך ההשפעה ירודה כאשר העכירות גבוהה והצפיפות של אי E. חיידקי קולי גבוהים.
77. מה זה כלור שיורי?
כלור שיורי הוא הכלור שנותר במים לאחר שהמים מחטאים בכלור למשך זמן מסוים. תפקודו הוא לשמור על יכולת חיידקים רציפה. מרגע שנכנסים המים לרשת הצינור לנקודת המים, יש לשמור על השפעת החיטוי במים כדי למנוע נזק פתוגני אפשרי וצמיחה מחודשת. זה מחייב כי כמות החיטוי שנוספה למים לא צריכה לא רק לענות על צרכי ההרג פתוגנים במים, אלא גם לשמור על כמות מסוימת של כמות שיורית כדי למנוע את הצמיחה המחודשת של פתוגנים במהלך תהליך הובלת המים. אם משתמשים בחיטוי כלור, אז החלק של חומר החיטוי העולה על צרכי החיטוי באותה עת הוא כלור שיורי.
לכלור שיורי יש שתי צורות: כלור שיורי חופשי (CL2, HOCL ו- OCL-) ושילוב כלור שיורי (NH2CL, NHCL2 ו- NCL3). שתי צורות אלה יכולות להתקיים באותה דגימת מים בו זמנית, וסכום השניים נקרא כלור שנותר בסך הכל. לכלור שיורי חופשי יש יכולת חיידקים חזקה, אך קל להתפרק. לכלור משולב משולב יכולת חיידקים חלשה, אך נמשכת זמן רב יותר במים. באופן כללי, כאשר אין אמוניה או אמוניום במים, הכלור הנותר הוא כלור שנותר חופשי, ואילו כאשר יש אמוניה או אמוניום במים, הכלור הנותר מכיל בדרך כלל רק כלור שיורי משולב, ולעתים כלור שיורי ושילוב משותף של כלור. כמות הכלור הנותר חייבת להיות מתאימה. נמוך מדי לא ישחק תפקיד במניעה וטיפול בפתוגנים. גבוה מדי לא רק יגדיל את עלות החיטוי, אלא גם עלול לגרום נזק לגוף האדם כאשר הוא במגע עם גוף האדם.
מבחינה רעיונית, כלור שיורי מתייחס לחומר חיטוי גז כלור וסדרת כלור. בעת שימוש בחומרי חיטוי אחרים שאינם כלור כמו כלור דו-חמצני, יש להבין את כלור שיורי כמתקן החיטוי שנותר במים לאחר תקופה מסוימת של מגע.
78. מהן השיטות לקביעת כלור שיורי? מהם ההיקפים החלים שלהם?
קביעת כלור שיורית יכולה להתבצע על ידי טיטרציה של יוד, קולורמטריה חזותית O-tolidine, N, N-diethyl-P-phenylenediamine (DPD) ברזלי ברזלי (GB 11897-89), N, N-diethyl-p-phenynediamine ספקטרופוטומטריה של GB (GB 1188), The Deathine Canynylenedyamine Spectrophotometry (GB 1188), GB), The Deathineinyneynylenedylenedylenediamine (GB). כלור במדגם המים; שיטת הקולורימטריה הוויזואלית O-tolidine יכולה לקבוע את סך הכלור הנותר והכלור הנותר החופשי בהתאמה על ידי שינוי הליך ההפעלה; שיטת ה- N, N-diethyl-P-phenylenediamine שיטת או שיטת הספקטרופוטומטריה יכולים לקבוע את הכלור החופשי או הכלור הכולל בטווח הריכוז של 0.03-5 מ"ג לליטר, ועל ידי שינוי הליך ההפעלה, ניתן לקבוע גם את המונוכרורמין, דיכלורמין וחלקם של כלור משולב.
שיטת טיטרציה יוד מתאימה לדגימות מים עם תכולת כלור שיורית הכוללת יותר מ- 1 מ"ג לליטר, והיא שיטה נפוצה לקביעת כמות הכלור שנוספה. השיטה Colorimetric הוויזואלית O-tolidine היא פשוטה להפעלה והיא שיטה נפוצה לקביעת כלור שיורי במי שתייה. טווח המדידה הוא 0.01-10 מ"ג לליטר. שיטת Tatration N, N-Diethyl-P-Phenylenediamine או שיטת הספקטרופוטומטריה בעלת רגישות גבוהה ויכולה לקבוע דגימות מים עם תכולת כלור נמוכה. זה מתאים לקביעת סך הכלור הזמין בביוב המכיל חומר אורגני. טווחי המדידה של שתי השיטות הם 0.05-1.5 מ"ג לליטר ו- 0.03-5 מ"ג/ל, בהתאמה.